激光共聚焦显微镜的原理与应用范围
激光扫描共聚焦显微镜是采用激光作为光源，在传统光学显微镜基础上采用共轭聚焦
原理和 装置，并利用计算机对所观察的对象进行数字图象处理的一套观察、分析和输出系
统。把光学成像的分辨率提高了 30%~40%，使用紫外或可见光激发荧光探针，从而得到细
胞或组织内部微细结构的荧光图像，在亚细胞水平上观察生理信号及细胞形态的变化，成为
形态学，分子生物学，神经科学，药理学，遗传学等领域中新一代的研究工具。
1 激光扫描共聚焦显微镜（LSCM）的原理
从基本原理上讲,共聚焦显微镜是一种现代化的光学显微镜,它对普通光镜从技术上作了以下
几点改进:
1．1 用激光做光源因为激光的单色性非常好,光源波束的波长相同,从根本上消除了色差。
1． 2 采用共聚焦技术在物镜的焦平面上放置了一个当中带有小孔的挡板,将焦平面以外的杂
散光挡住,消除了球差;并进一步消除了色差
1． 3 采用点扫描技术将样品分解成二维或三维空间上的无数点,用十分细小的激光束(点光
源)逐点逐行扫描成像,再通过微机组合成一个整体平面的或立体的像。而传统的光镜是在场
光源下一次成像的,标本上每一点的图像都会受到相邻点的衍射光和散射光的干扰。这两种
图像的清晰度和精密度是无法相比的。
1．4 用计算机采集和处理光信号,并利用光电倍增管放大信号图
在共聚焦显微镜中,计算机代替了人眼或照相机进行观察、摄像,得到的图像是数字化的,可以
在电脑中进行处理,再一次提高图像的清晰度。而且利用了光电倍增管,可以将很微弱的信号
放大,灵敏度大大提高。由于综合利用了以上技术。可以说ＬＳＣＭ是显微镜制作技术、光
电技术、计算机技术的完美结合,是现代技术发展的必然产物。
2 ＬＳＣＭ在生物医学研究中的应用
目前,一台配置完备的ＬＳＣＭ在功能上已经完全能够取代以往的任何一种光学显微镜,
它相当于多种制作精良的常用光学显微镜的有机组合,如倒置光学显微镜、紫外线显微镜、
荧光显微镜、暗视野显微镜、相差显微镜(ＰＨ)、微分干涉差显微镜(ＤＩＣ)等,因此被称为
万能显微镜,通过它所得到的精细图像可使其他的显微镜图像无比逊色。
2．1 观察活细胞、活组织ＬＳＣＭ在不损伤细胞的前提下,对活组织、活细胞进行观察和测
量，这不仅省去了繁琐的样品前期处理过程(如脱水、脱蜡、染色等);而且观察过的样品还可
以继续用于其他的研究。这种功能对于细胞培养、转基因研究尤为重要。这可以说是ＬＳＣ
Ｍ最大的优势。
2．2 生化成分精确定位观察配合专用的分子探针,对于要检测的成分不仅可以定位到细胞水
平,还可以定位到亚细胞水平和分子水平
2．3 动态观察在同一样品平面上随时间进行连续扫描,就可分析细胞结构、内含、和标记等
动力学变化。目前在这方面做得最多的是使用ＬＳＣＭ观察心肌或平滑肌细胞内游离钙、钠、
钾离子浓度或ｐＨ的动态变化。
2．4 数据、图像的数字化用计算机代替了普通的照相机,得到的图像是数字化的,可及时输出
或长期储存,而且还可进一步加工处理。
2．5 定量测量首先应用专一的荧光探针对样品进行染色,样品的荧光强度和所测成分的含量
呈正比,如果其余条件固定,通过对比各组样品之间的荧光强度值,可得出特定成分的含量比。
3 华中地区有激光共聚焦显微镜机构的品牌和技术参数
3．1 中国科学院武汉病毒研究所，
3．2 湖南中南大学湘雅二医院代谢内分泌研究所
LSCM(BIO-ROD1024,HOMEL HEMPSTEAD,UK
发表过应用激光扫描共聚焦显微镜观察骨组织为损伤的实验研究
3．3 华中科技大学同济医学院附属同济医院神经内科
激光扫描共聚焦显微镜(ＭＲＣ 1024 型),美国ＢｉｏＲａｄ公司生产
发表过激光扫描共聚焦显微镜检测核因子κＢ
4 激光扫描共聚焦显微镜的使用（cAMP 在体测量为例）
4．1 样品制备
4．1．1切片 实验标本要求单层，并能很好地贴附在样品池中。所以，组织标本无论
是石蜡切片还是冰冻切片，均为越薄越好。常用的贴附剂有：多聚赖氨
酸，伴刀豆球蛋白，蛋清，琼脂明胶cell-Tak, vectabond等。
4．1．2培养细胞 培养细胞可以满足要求，如果用购置仪器时所带的薄底培养瓶进行培养
则更佳
4．1．3 激光共聚焦观察样品处理注意事项
首先要尽量保持生物材料的天然状态，避免赝像、变形和失真，因此须将生物材料做固
定处理；制片必须薄而透明，才能在显微镜下成像，除将材料切成薄片或通过轻压或其他手
段使之分散外，还需采用其他方法使它透明和染色，以便更好地观察到结构的细节。需长期
保存的制片，还应进行脱水和封固。
显微制片法一般包括切片法、整体封片法、涂片法和压片法 4 类。
4．2 荧光探针的选择
荧光探针的发展非常迅速，目前仅美国 Molecular Probes 公司就可提供 1800 多种荧光
探针[3，每年该公司还不断推出新的荧光探针。通常每项检测内容或被测物质都有几
种或几
十种有关的或特异的荧光探针。选择合适的荧光探针是有效地进行实验并获取理想实验结果
的保障。荧光探针的选择主要从以下几个方面考虑：(1)现有仪器所采用的激光器。如我校
购进的激光扫描共聚焦显微镜(ACAS ULTMA312，美国 Meridian 公司产品)采用氩离子激光
器，激发波长为 351～3nm，488nm，514nm，可激发多种荧光探针；(2)荧光探针的光稳
定性和光漂白性。在进行荧光定量和动态荧光监测时，要求荧光探针有较好的光稳定性越高
越好，也可通过减少激光扫描次数或降低激光强度的方法，来减轻光漂白的程度。但在进行
膜流动性或细胞间通讯检测时则需要荧光探针既有一定的光稳定性又要有一定的光漂白性；
(3)荧光的定性或定量。仅做荧光定性或仅是观察荧光动态变化时，选择单波长激发探针，
无需制作工作曲线。做定量测量时最好选用双波长激发比率探针，利于制定工作曲线；(4)
荧光探针的特异性和毒性。尽量选用毒性小、特异性高的探针；(5)荧光探针适用的 pH。大
多数情况下细胞的 pH 在生理条件下，但当 pH 不在此范围时，考虑适用该环境 pH 的荧光
探针是有必要的。同时应注意染液自身的 pH 值会影响带电荷的荧光探针与胞内组份之间的
结合，因此在染液的配备时需加以考虑。
不同的荧光探针在不同标本的效果常有差异，除综合考虑以上因素以外，有条件者应进
行染料的筛选，以找出最适的荧光探针。此外，许多荧光探针是疏水性的，很难或不能进入
细胞，需使用其乙酰羟甲基酯(acetoxymethyl,AM)形式，也就是荧光探针与 AM 结合后变成
不带电荷的亲脂性化合物方易于通过质膜进入细胞，在细胞内荧光探针上的 AM 被非特异
性酯酶水解，去掉 AM 后的荧光探针不仅可与细胞内的靶结构或靶分子结合且不易透出质
膜，从而能有效的发挥作用。
4．2．1 细胞内游离钙
美国分子公司提供的钙荧光探针有 20 多种，激光扫描共聚焦显微镜常用的有 Fluo-3、
Rhod-1、Indo-1、Fura-2 等，前两者为单波长激光探针，利用其单波长激发特点可直接测量
细胞内 Ca2+动态变化，为钙定性探针；后两者为双波长激发探针，利用其双波长激发特点
和比率技术，能定量细胞内［Ca2+］i，为钙定量探针
4．2．2 DNA 和 RNA
核酸的荧光探针有 50 多种［2］，用于激光扫描共聚焦显微镜的主要有 Acridine Orange(吖
啶橙，AO)、Propidium Iodide(碘化丙啶，PI)。
4．2．3 膜电位
DiBAC4(3)为最常用的膜电位荧光探针［5］，DiBAC4(3)为带负电荷的阴离子慢反应染料。
该探针本身无荧光，当进入细胞与胞浆内的蛋白质结合后才发出荧光，测量时要求细胞浸在
荧光染料中。当细胞内荧光强度增加即膜电位增加示细胞去极化；反之，细胞内荧光强度降
低即膜电位降低示细胞超极化。Rhodamine 123 主要用于线粒体膜电位测量［6］。
Rhodamine123 是一种亲脂性阳离子荧光探针，当线粒体膜内侧负电荷增多时，荧光强度增
加，与 DiBAC4(3)的表示形式相反。
4．2．4 pH 值
常用于偏中性pH 即细胞胞浆pH 检测的荧光探针有SNARF 类(SNARF-1SNARF-calcein)、
SNAFL 类(SNAFL-1、SNAFL-calcein)、BCECF 等，这些探针均为疏水性探针，需使用其
AM 形式。FITC-dextran 则适用于 pH 范围 4～6 之间［7］，如溶酶体 pH 的检测，该探针也
不能透过质膜，但可通过细胞胞饮作用进入溶酶体，因此应选择分子量稍小的 Dextran(葡聚
糖)。
4．2．5 细胞内活性氧基
活性氧(active oxygen species)可影响细胞代谢，与蛋白质、核酸、脂类等发生反应，有
些反应是有害的，因此测量活性氧在毒理学研究中有一定的意义。根据检测活性氧的不同可
选择不同的荧光探针。常用荧光探针有 Dichlorodihydrof-luorescein diacetate(2，7-二氯二氢
荧光素乙酰乙酸、H2DCFDA)［2］，其原理是不发荧光的 H2DCFDA 进入细胞后能被存在
的过氧化物、氢过氧化物等氧化分解为 dichlorofluorescein(DCF)而产生荧光，其反应灵敏到
10-12mole 水平，荧光强度与活性氧的浓度呈线性关系。
4．2．6 细胞间通讯
激光扫描共聚焦显微镜可采用荧光光漂白恢复 FRAP 技术检测细胞缝隙连接通讯，该方法的
原理是一个细胞内的荧光分子被激光漂白或淬灭，失去发光能力。而临近未被漂白细胞中的
荧光分子可通过缝隙连接扩散到已被漂白的细胞中，荧光可以逐渐恢复。由于光漂白过程是
不可逆的，因此可通过观察已发生荧光漂白细胞其荧光恢复过程的变化量来判断细胞缝隙连
接的通讯功能。采用 FRAP 技术检测细胞间通讯常用荧光探针是 6-carboxyfluorescein
diacetate(6-羧基荧光乙酰乙酸、CFDA)。需用其酯化形式 CFDA-AM。该技术可用于研究胚
胎发生、生殖发育、神经生物学、肿瘤发生等过程中缝隙连接通讯的基本机制和作用。由于
某些毒性物质尤是促癌物可影响缝隙连接介导的物质运输，因此该方法也可用于鉴别对缝隙
连接作用有潜在毒性的化学物质。
4．2．7 细胞膜流动性
采用荧光光漂白恢复(FRAP)技术还可对细胞膜流动性进行研究［9］。利用 NBD-C6-HPC
荧光探针标记细胞膜磷脂，然后用高强度的激光束照射活细胞膜表面的某一区域(1～2µm)，
使该区域的荧光淬灭或漂白，再用较弱的激光束照射该区域。可检测到细胞膜上其它地方未
被漂白的荧光探针流动到漂白区域时的荧光重新分布情况。荧光恢复的速率和程度可提供有
关的信息，如用于观察细胞受体介导内吞过程中膜磷脂流动性的变化情况。NBD-C6-HPC
在温度稍高时可能会进入细胞内，因此荧光染色和测量时应在低于常温的环境下进行。
4．2．8 细胞结构、受体、蛋白质、酶等
激光扫描共聚焦显微镜可获得较一般普通光学显微镜分辨率高的细胞内线粒体、高尔基
复合体、内质网、溶酶体等细胞器图象，同时还可动态观察活细胞状态下细胞器的形态学变
化情况，此外还可通过光学切片即断层扫描技术进行三维重建，显示细胞器的空间关系及其
变化。适用于线粒体的荧光探针较多，如 Mitotracker、DA SPMI、DA SPEI、JC-1、Rhodamine
123 等。高尔基复合体常用的荧光探针有 NBD ceramide、BODIPY ceramide。内质网主要用
Dil、DiOC6(3)。溶酶体的荧光探针有 DAMP、neutral red。有报道选用 NBC-PC 标记细胞膜、
Mitotracker 标记线粒体、Hoechst 33342 标记细胞核 DNA，同时显示细胞的三部分结构。
4．3 激光扫描共聚焦显微镜的使用
4．3．1根据标本选择的荧光探针对激发波长选择激光器类型。
4．3．2根据荧光探针的发射波长选择相应的滤片，K凌镜无滤片扫描则不需要这一步。最好
根据现有仪器配制选择荧光探针。
4．3．3根据实验目的选择合适当软件。一般仪器的软件分静息状态度图像分析软件、动态
测量软件和特殊软件。
4．3．4按软件要求设置有关参数，进行观察和分析。
5 激光扫描共聚焦显微镜的功能
激光扫描共聚焦显微镜的功能主要分图像处理功能和细胞生物学功能两个方面
5．1 图层处理功能
5．1．1 组织光学切片：激光扫描共聚焦成像利用照明点与探测点共轭特性，可有效抑制
同一焦点平面上非测量点的杂散荧光及来自样品中非焦平面的荧光，从而获得普通光镜无法
达到的分辨率。同时具有深度识别率和纵向分辨率。它以一个微动步进马达控制载物台的升
降，可以逐层获得高反差、高分辨率、高灵敏度的二维光学横断面图像，从而对活的或固定
的细胞及组织进行无损伤的系列“光学切片”(Optical sectioning)，得到各个层面的信息。
这种功能也被称为“细胞CT”或“显微CT”。
5．1．2 三图像重建：激光扫描共聚焦显微镜通过薄层光学切片功能，可获得真正意义上
的三维数据，经过计算机图像处理及三维重建软件，沿X、Y和Z轴或其它任意角度来观察标
本的外形及剖面，并得到三维的立体结构，从而能十分灵活、直观地进行形态观察，并揭示
亚细胞结构的空间关系。 §
5．1．3 细胞物理会生物化学测定：激光扫描共聚焦显微镜可进行低光探测、活细胞定量
分析和重复极佳的荧光定量分析，从而能对单细胞或细胞群的溶酶体、线粒体、内质网、细
胞骨架、结构性蛋白质、DNA、RNA、酶和受体分子等细胞特异结构的含量、组份及分布进行
定性、定量、定时及定位测定；同时还可测定分子扩散、膜电位、氧化－还原状态和配体结
合等生化反应变化程度。另外，还可以对细胞的面积、平均荧光强度、积分荧光强度、细胞
周长、形状因子及细胞内颗粒数等参数进行自动测定。 §
5．1．4 荧光的定量、定位分析：激光扫描共聚焦显微镜可对单标记或双标记细胞及组织
标本的共聚焦荧光进行定量分析，并显示荧光沿Z轴的强度变化；同时还可自动将荧光图像
与象差图像重叠以显示荧光在形态结构上的精确定位。还可测量标本深层的荧光分布。也适
用于高灵敏度的快速荧光测定，准确地监测抗原表达、荧光原位杂交斑点及细胞结合和杀伤
的形态学特性，并作定量分析
5．1．5 Ca2+ 、pH及其它细胞内离子的实时定量测定：利用Flu-3、Indo-1、Fura-Red
等多种荧光探针，激光扫描共聚焦显微镜能完成活细胞生理信号的动态监测，可对单个细胞
内各种离子(Ca2+、K+、Na+、Mg2+和pH)的比例及动态变化作毫秒级实时定量分析；可以定
量探测胞质中(Ca2+对肿瘤启动因子、化学因子、生长因子及各种激素等刺激反应；
使用荧
光探针Flu-3和SNARF可同时测定Ca2+和pH值。
5．2 细胞生物学功能
5．2．1 荧光光漂泊恢复(FRAP)技术：激光扫描共聚焦显微镜能借助于高强度脉冲式激光
照射细胞的某一区域，从而造成该区域荧光分子的光淬灭，其周围的非淬灭荧光分子将以一
定速率向受照区域扩散，扩散速率可直接进行监测，由此揭示细胞结构和各种变化的机制，
用于研究细胞骨架构成、核膜结构和大分子组装等。同样作为第二信使,环腺嚓吟单核昔酸
cAMP的研究也同样为人们所关注:Nagai等利用FRET来观察cAMP诱导的磷酸化,得到了活
细胞中蛋白激酶A的动态变化曲线.在Cameleons-2的改造上,Pearce等利用Cameleons标记金
属硫蛋白(MT),研究了一氧化氮刺激下MT的功能.
5．2．2 胞间通讯的研究：激光扫描共聚焦显微镜通过测量细胞缝隙连接介导的分子转移，
观察相邻细胞之间的胞间通讯。用于研究肿瘤启动子、生长因子以及细胞内Ca2+ 、pH和cAMP
对缝隙连接和胞间通讯的影响。
5．2．3 细胞膜流动性测定：激光扫描共聚焦显微镜可通过专用计算机软件，对细胞膜流
动性进行定量和定性分析，在研究膜的磷脂酸组成分析、药物效应和作用位点、温度反应测
定及物种比较等方面有重要作用。
5．2．4 光活化技术：激光扫描共聚焦显微镜具有光活化测定功能，可以控制笼锁探针分
解的瞬间光波长和照射时间，从而人为地控制多种生物活性产物及其它化合物发挥作用的时
间和空间，以此研究可形成笼锁化合物的许多重要活性物质（如神经递质、细胞内第二信使
cAMP、核苷酸、Ca2+ 及某些荧光素等）在细胞增殖、分化等生物代谢过程中的作
用。
通过上述介绍,共聚焦显微镜强大的功能已可见一斑。与其他的生物学技术(如免疫组化
技术、原位杂交技术等)相配合,它的检测范围进一步扩大。我们几乎可利用共聚焦显微镜定
性、定量地检测细胞内的任何一种生化成分
